大鼠肝微粒体制备过程中,活性保存是确保实验结果可靠性的核心环节,其关键因素涵盖从动物处理到最终保存的全流程控制,具体如下:
一、动物选择与预处理
成年健康大鼠是制备高活性微粒体的基础,因其肝脏代谢能力强、微粒体含量高。实验前需禁食24小时以减少肝糖原干扰,提高回收率。若需诱导酶活性,可在处死前5天腹腔注射多氯联苯(PCB),剂量为300mg/kg,以增强细胞色素P450等代谢酶的表达。
二、低温操作与缓冲液优化
全程需在0-4℃冰浴环境中进行,避免酶热变性。缓冲液需维持适宜离子强度与pH值,常用含0.25M蔗糖的磷酸盐缓冲液或Tris-HCl缓冲液,并添加巯基乙醇等抗氧化剂防止脂质过氧化。此外,添加蛋白酶抑制剂可减少蛋白质降解,保护微粒体膜完整性。
三、组织破碎与离心分离
机械破碎时,采用超声波或高压均质机可更高效释放微粒体,同时减少活性损失。离心是关键步骤,需通过差速离心法逐步分离:先以10,000g离心20分钟去除细胞核和线粒体,再以40,000g离心90分钟富集微粒体沉淀。离心条件需根据设备性能调整,避免过度离心导致膜结构破坏。
四、纯化与储存
密度梯度离心可进一步去除微囊泡等杂质,提高纯度。复苏时需用含20%甘油的缓冲盐溶液轻柔混匀,避免泡沫产生。短期使用可保存于-80℃,长期保存则需液氮速冻,且需避免反复冻融,以维持酶活性。实验表明,反复冻融超过10次的样本会导致关键酶活衰减达34%。